Оценка хирургического адгезива BioGlue для выполнения микрохирургических артериальных анастомозов: влияние на сосудистый поток более 1 мм (аорта крыс) и менее 1 мм (бедренная артерия крыс)

Объект исследования. Несмотря на недавние достижения и инновации в области микрохирургии и свободных лоскутов, сосудистые анастомозы по-прежнему выполняются вручную с использованием традиционных методов. Целью данного исследования является оценка краткосрочной и среднесрочной эффективности глутарового альдегида с хирургическим адгезивом бычьего сывороточного альбумина (БСА) при выполнении артериальных микроанастомозов.
Материал и методы. Исследование проведено на 18 крысах-самцах линии Вистар. Животным 1-й группы наложили 14 бедренных анастомозов по типу «конец-в-конец», животным 2-й группы – 10 аортальных анастомозов. С помощью ультразвукового исследования времени прохождения измеряли поток до выполнения анастомозов, сразу после и через 24 ч после их наложения. Техника анастомозов заключалась в наложении минимального количества швов для сближения сосудов и применении адгезива BioGlue для герметизации соединения. Статистическую обработку полученных результатов выполняли с помощью пакета программ SSPS.
Результаты. Для получения хорошего результата в среднем потребовалось наложение 2 швов на бедренных артериях и 4 – на аорте. Среднее время наложения анастомозов составило 16,5 мин в 1-й группе и 32,5 мин – во 2-й группе. 93% анастомозов в 1-й группе и 100% во 2-й группе были проходимы сразу после их выполнения, а 77% в 1-й группе и 100% во 2-й группе – через 24 ч, с адекватными показателями потока. Различий в преанастомозном и постанастомозном (24-часовом) диаметре аорты не выявлено.
Выводы. Применение глутарового альдегида с БСА является многообещающей техникой для микрохирургии будущего, а также быстрым, простым и надежным альтернативным решением наложению микрососудистых анастомозов, особенно когда хирургу необходимо избежать повторной травмы стенки сосуда или он стремится снизить риск возникновения тромбоза.

1. Schlechter B., Guyuron B. A comparison of different suture techniques for microvascular anastomosis. Annals of Plastic Surgery. 1994;33:28-31.

2. Ostrup L., Berggren A. The UNILINK instrument system for fast and safe microvascular anastomosis. Ann Plast Surg. 1986;17:521-525.

3. Jandali S., Wu L.C., Vega S.J., et al. 1000 Consecutive Venous Anastomoses Using the Microvascular Anastomotic Coupler in Breast Reconstruction. Plastic and Reconstructive Surgery. 2010;125:792-798.

4. Pratt G.F., Rozen W.M., Westwood A., et al. Technology-assisted and sutureless microvascular anastomoses: evidence for current techniques. Microsurgery. 2012;32:68-76.

5. Pafitanis G., Nicolaides M., O’Connor E.F., et al. Microvascular anastomotic arterial coupling: A systematic review. Journal of Plastic, Reconstructive and Aesthetic Surgery. 2021;74:1286-1302.

6. Gundry S.R., Black K., Izutani H. Sutureless coronary artery bypass with biologic glued anastomoses: Preliminary in vivo and in vitro results. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 2000;120:473-477.

7. Raanani.E., Latter.D.A., Errett.L.E., et al. Use of “BioGlue” in aortic surgical repair. Annals of Thoracic Surgery. 2001;72:638-640.

8. Rötker J., Trösch F., Grabosch D., et al. Vascular Anastomosing by Gluing - An Experimental Study. Thoracic and Cardiovascular Surgeon 2004;52:6-9.

9. Schiller W., Rudorf H., Welzel C.B., et al. Sutureless anastomoses of rabbit carotid arteries with BioGlue. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 2007;134:1513-1518.

10. Kokozidou M., Katsargyris A., Verhoeven E.L.G., et al. Vascular access animal models used in research. Annals of Anatomy. 2019;225:65-75.

11. Ballestín A., Casado J.G., Abellán E., et al. A pre-clinical rat model for the study of ischemia-reperfusion injury in reconstructive microsurgery. Journal of Visualized Experiments. 2019;153:1-5.

12. Saunders M.M., Baxter Z.C., Abou-Elella A., et al. BioGlue and Dermabond save time, leak less, and are not mechanically inferior to two-layer and modified one-layer vasovasostomy. Fertility and Sterility. 2009;91:560-565.

13. Menon N.G., Downing S., Goldberg N.H, et al. Seroma prevention using an albumin-glutaraldehyde-based tissue adhesive in the rat mastectomy model. Annals of Plastic Surgery. 2003;50:639-643.

14. Fürst W., Banerjee A. Release of glutaraldehyde from an albumin-glutaraldehyde tissue adhesive causes significant in vitro and in vivo toxicity. Annals of Thoracic Surgery. 2005;79:1522-1528.

15. Han S.K., Kim S.W., Kim W.K. Microvascular anastomosis with minimal suture and fibrin glue: Experimental and clinical study. Microsurgery. 1998;18:306-311.

16. Padubidri A.N., Browne E. A new method of applying fibrin glue at the microvascular anastomotic site: The “Paintbrush” technique. Microsurgery. 1996;17:428-430.

17. Padubidri A.N., Browne E., Kononov A. Fibrin glue-assisted end-to-side anastomosis of rat femoral vessels: Comparison with conventional suture method. Annals of Plastic Surgery. 1996;37:41-47.

18. Sacak B., Tosun U., Egemen O., et al. Microvascular anastomosis using fibrin glue and venous cuff in rat carotid artery. Journal of Plastic Surgery and Hand Surgery. 2015;49:72-76.

19. Cho A.B., Wei T.H., Ruiz-Torres L., et al. Fibrin glue application in microvascular anastomosis: comparative study of two free flaps series. Microsurgery. 2009;29:24-28.

20. Mudigonda S. kiran, Murugan S., Velavan K., et al. Non-suturing microvascular anastomosis in maxillofacial reconstruction- a comparative study. Journal of Cranio-Maxillofacial Surgery. 2020;48:599-606.

21. Aizawa T., Kuwabara M., Kubo S., et al. Sutureless Microvascular Anastomosis using Intravascular Stenting and Cyanoacrylate Adhesive. Journal of Reconstructive Microsurgery. 2018; 34: 8–12.

22. Green A.R., Milling M.A.P., Green A.R.T. Butylcyanoacrylate adhesives in microvascular surgery: An experimental pilot study. Journal of Reconstructive Microsurgery. 1986; 2: 103–105.

23. Shaughness G., Blackburn C., Ballestín A., et al. Predicting Thrombosis Formation in 1-mm-Diameter Arterial Anastomoses with Transit-Time Ultrasound Technology. Plastic and Reconstructive Surgery. 2017; 139: 1400– 1405.

24. Castling B., Bhatia S., Ahsan F. Mönckeberg’s arteriosclerosis: Vascular calcification complicating microvascular surgery. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 2015; 44: 34–36.

25. Krag C., Holck S. The value of the patency test in microvascular anastomosis: Correlation between observed patency and size of intraluminal thrombus. An experimental study in rats. British Journal of Plastic Surgery. 1981; 34: 64–66.

26. Selber J.C., Garvey P.B., Clemens M.W., et al. A prospective study of transit-time flow volume measurement for intraoperative evaluation and optimization of free flaps. Plastic and Reconstructive Surgery. 2013; 131: 270– 281.

27. Pafitanis G., Raveendran M., Myers S., et al. Flowmetry evolution in microvascular surgery: A systematic review. Journal of Plastic, Reconstructive and Aesthetic Surgery. 2017; 70: 1242–1251.